miércoles, 27 de enero de 2016

Epsilon test

FUNDAMENTO

Consiste en un método que combina los métodos de difusión en agar y los de dilución para determinar CMI, mediante lectura directa, determinar la concentración inhibitoria mínima.
Similar a la difusión en agar pero en lugar de discos son tiras de E-test que contienen, en su suoerficie inferior, una gradiente de concentración de antimicrobiano ( equivalente a 15 diluciones ).
Cuando el antibiótico difunde, establece un gradiente de continuo de antimicrobiano a lo largo de la tira y despúes de la incubación se forma una zona elíptica de inhibición del crecimiento.
La CMI se corresponde con el punto donde el borde del área de inhibición del crecimiento intersecciona con la tira.

PROCEDIMIENTO:

1. Inocular  3-4 colonias en 5 mL de TSA o de SSF e icubar a 37ºC d 5-10 min hasta que la turbidez sea visible.
2.Ajustar turbidez con SSF hasta obtener un equivalente a 0.5 de la escala de Mc Farland.
3. Inoculamos la superficie de la placa M-H con un hisópo, sembrando en masa y dando cuatro pases a la placa.
4. Colocamos la tira sobre la superficie de forma gradual, produciéndose de manera inmediata la difusión del antibiótico.





MÉTODO DE KIRBY-BAUER/DIFUSIÓN POR DISCO

FUNDAMENTO

Consiste en depositar discos de diferentes antibióticos, sobre las superficie de una Placa de Petri que contiene agar previamente inoculado con el microorganismo y tras un periodo de incubación de 18-24 horas, observar la zona o halo de inhibición que aparece rodeando al disco de antibiótico.

MATERIALES


Placa de cultivo puro ( en este caso hemos utilizado Klebsiella)
Mechero de alcohol
Asa de siembra
Hisopo
NaCl
Medio de cultivo.
Antibióticos (Ampilicina, Cefotaxima, Tobramicina y Amoxicilina).

PROCEDIMIENTO:

1. Preparar un cultivo de 18 horas, en TSA, en BHIA, de las bacterias que hay que ensayar.

2. Inocular 3-4 colonias en 5 mL de TSA o de SSF e incubar a 37ºC de 5-10 min hasta que la turbidez sea visible.





















3. Ajustar turbidez con SSE hasta obtener un equivalente a 0.5 mL de la escala de Mc Farland.
4. Inoculamos la superficie de la placa M-H con un hisopo, sembrando en masa y dando cuatro pases a la placa.





5. Colocar los discos de antibióticos separados 20 mm y a 15 mm del borde de la placa.




- Con aplicador automático.



6. Incubar la placa en posición invertida durante 18-24 horas a 37ºC.


7. Medir los diámetros de las zonas de inhibición. Si hay dos halos juntos se mide en otra dirección.
















8. Corroborar si es sensible definitivamente en las tablas que establecen los valores de referencia.

RESULTADOS: 

Sensible a la amoxicilina, tobramicina, cefotaxima y resistente a la ampicilina.

martes, 19 de enero de 2016

OBSERVACIÓN DE GÉRMENES MUERTOS : PREPARACIÓN DE FROTIS BACTERIANO, TINCIÓN SIMPLE O SENCILLA

OBJETIVO

1. Realizar extensiones o frotis bacterianos a partir de muestras sólidas y líquidas.
2. Realizar una tinción simple de las bacterias y levaduras presentes en distintas muestras naturales.
3. Observar la morfología bacteriana y comenzar a distinguir los diferentes tipos de agrupaciones existentes .
4. Practicar con el microorganismo empelando el máximo aumento, aplicando correctamente el aceite de inmersión y regulando adecuadamente el condensador y el diafragma.


MATERIAL

Asa de platino, mechero Bunsen, portaobjetos,
muestras bacterianas de origen natural, colorantes para tinción ( cristal violeta, safranina, azul de metileno,etc), microscopio y aceite de inmersión.









PROCEDIMIENTO

1. Extensión: 
- Colocar una gota de agua destilada en el porta. 
- Con el asa de platino , estéril, transferir una pequeña cantidad del cultivo bacteriano en medio sólido a la gota .
- Remover la mezcla con el asa hasta formar una suspensión homogénea y extenderla bien con el asa.
- Si el material de partida es un cultivo en medio líquido, no es necesario realizar el paso1, basta con realizar directamente la extensión.

2. Desecación:

La preparación se deja secar, a temperatura ambiente o calentando muy suavemente.

3. Fijación : 

Formas más habituales de fijación:
- Por calor: realizando 3 pases por la llama azul del mechero Bunsen y dejando enfriar, pues si le añadimos el colorante precipitaría por el calor.

- Por fijadores; pueden ser simples como el alcohol o mezclas fijadoras.






































TINCIÓN SIMPLE O SENCILLA : BACTERIAS DEL YOGOURT 

1. Sobre un portaobjetos desengrasado realizar la extensión o frotis, tomando una mínima porción de yogur, con una asa de siembra previamente flameada.
2. Secar al aire.
3. Fijar con calor pasando, tres veces, el porta sobre la llama del mechero.
4. Teñir con un colorante cualquiera de los arriba indicados durante 1-2 min ( cristal violeta, safranina, azul de metileno, etc..)
5. Secar la preparación.
Observar con 100x, poniendo una pequeña gota de aceite de inmersión.















LEVADURAS 

1. Con un asa de siembra , previamente flameada, se deposita una gota de agua estéril sobre un portaobjetos limpio y desengrasado.

2. Flamear de nuevo el asa.
3. Tomar una pequeña porción de levadura de cerveza, suspenderla y homogeneizarla en la gota de agua y realizar la extensión o frotis.
4. Secar al aire 
5. Fijar con calor pasando, tres veces, el porta sobre la llama del mechero.
6. Teñir con un colorante cualquiera de los arriba indicados durante 1-2 min ( cristal violeta, safranina, azul de  metileno, etc..).
7. Secar la preparación.
8. Observar con 100x, poniendo una pequeña gota de aceite de inmersión.






BACTERIAS DEL SARRO DENTAL


1. Con un asa de siembra, previamente flameada, se deposita una gota de agua estéril sobre un portabjetos limpio  y desengrasado.













2. Flamear de nuevo el asa.

3. Con un hisopo estéril tomar una pequeña porción de sarro dental suspenderlo y homogeneizarlo en la gota de agua y realizar la extensión o frotis.




















4. Secar al aire.
5. Fijar con calor pasando, tres veces, el porta sobre la llama del mechero.





















6. Teñir con un colorante cualquiera de los arriba indicados durante 1-2 minutos.
7. Secar la preparación.

8. Observar con 100x, poniendo una pequeña gota de aceite de inmersión.