TINCIÓN SENCILLA Y MEDIO DE CULTIVO

Esta tinción permite observar la morfología bacteriana, ya que la mayor parte del material no celular no se tiñe.

MATERIAL

- Muestra biológica o cultivo bacteriano ( yogurt, etc)
- Portaobjetos limpio y desengrasado.
- Solución salina estéril o agua destilada.
- Equipo de tinción ( cristalizador, barras paralelas, frasco lavador )
- Pinzas, asas de platino, pipeta Pasteur, microscopio.
- Colorantes: Azul de metileno, safranina, fucsina diluida,etc...

TÉCNICA

1. Extensión del material a observar ( muestras clínicas o cultivos bacterianos)

2. Desecación.
3. Fijación: mediante 3 pases por la llama del mechero Bunsen ( debe quedar caliente al dorso de la mano pero sin quemar ), dejar enfriar.

4. Coloración: Consiste en cubrir la preparación, durante 1-2 min, con el colorante ( azul de metileno, safranina, fucsina diluida, etc...)
5. Lavar con agua, para eliminar el exceso de colorante, teniendo la precaución de no dirigir el chorro directamente al frotis.



















6. Secar al aire o con el papel de filtro.

7. Observar en microscopio ( objetivo de 100x, aceite de inmersión, condensador bajo y diafragma casi abierto.

ANTISEPSIA DE LA PIEL

FUNDAMENTO

Comprobar el poder de las distintos desinfectantes y anotar los resultados.
Comparar los resultados de los compañeros y hacer una tabla indicando el antiséptico empleado y el nº de colonias en donde hubo crecimiento.

MATERIAL

- Agua oxigenada
- Povidona yodada ( Betadine)
- Alcohol al 96%.
- Solución isótonica estéril ( NaCl al 0.85%).
- Agua y jabón
- Hisópos estériles
- Placa de Petri con agar nutritivo estéril.





PROCEDIMIENTO

1. Dividimos la placa en dos mitades con un rotulador y en un lado marcamos '' control '' y el otro '' jabón y agua ''.

2. Humedecemos  un hisopo con solución salina y frotamos el brazo ( cara interna) derecha e inoculamos mediante estrías en el control.

3. Humedecemos con otro hisopo con el agente antiséptico asignado y frotarse solo una vez en el antebrazo izquierdo en un área de 5cm.

4. Tras el tiempo establecido (1min) , frotamos en el mismo brazo o con un hisopo con  solución salina e inoculamos mediante estrías en el alcohol.

5. Incubamos  en la estufa de cultivo durante 24-48 h a 37ºC y ya realizamos la observación.






















6. Contar colonias e interpretar resultados
































RESULTADOS:

1. De los antisépticos utilizados en la práctica el que considero más eficaz es el alcohol.
2. En la placa en la que hemos contado más colonias es en la que habíamos depositado agua y jabón.
3. El antiséptico que he empleado yo es el agua y el jabón.
4. Primera placa 26 colonias en las primeras 24 horas.
En la segunda placa hay muchas colonias en las primeras 24 horas.
Trás 48 horas + de 100 colonias en la de agua y jabón ( No se pueden contar)
26 colonias en la de alcohol.

PREPARACIÓN DE MEDIO DE CULTIVO

Un medio de cultivo consta de un gel o una solución que cuenta con los nutrientes necesarios para permitir, en condiciones favorables de pH y temperatura, el crecimiento de virus, microorganismos , células , tejidos vegetales o incluso pequeñas plantas. Según lo que se quiera hacer crecer, el medio requerirá unas u otras condiciones. Generalmente se presentan desecados en forma de polvo fino o granular antes de ser preparados; ya preparados pueden encontrarse en estado sólido, semisólido o líquido. 


MATERIALES
- Probeta 
- Matraz
- Microondas
- Agar citratado
- Agua destilada
- Trozo de papel
- Tubos para medio y tapones
- Autoclave
- Gradilla


PROCEDIMIENTO

1. Pesamos 4g de agar citratado.

2. Vertemos 100 mL de agua destilada en la probeta.

3. Mezclamos y tapamos el matraz con un trozo de papel.

4. Lo introducimos en el microondas hasta que se disuelva todo y no queden grumos en el fondo.

5. A continuación sacamos el matraz y lo introducimos en el autoclave.
6. Finalmente lo sacamos del autoclave, lo vertemos en los tubos y los inclinamos para conseguir el medio en flauta.

OBSERVACIÓN EN FRESCO Y BACTERIAS

MATERIALES

1. Portaobjetos
2. Cubreobjetos
3. Microscopio
4. Pipeta Pasteur


PROCEDIMIENTOS

1. Preparamos la muestra cogiéndo tierra y agua y mezclamos y lo dejamos hasta el día siguiente.
2. Ponemos una gota de la mezcla en un portaobjetos y colocamos el cubreobjetos.
3. Luego, observamos distintas bacterias y distinguimos Gram + y Gram -.


OBJETIVO 

Observar las distintas morfologías y diferenciar entre gram + y gram -.

                                                              ANTRACIS GRAM +

                                                               
                                                                   ASPERGUILUS

                                            BACILO ANTRACIS GRAM +

                                                             BACTERIAS

                                                             

                                                                BACTERIAS

                                                           DIFTERIA GRAM +

                                                                 DIFTERIA GRAM +

                                                                  ECOLI GRAM +

HUEVO FASCIOLA HEPÁTICA

LA TENIA

PENICILLIUM